Минеральный субстрат это: Минеральные субстраты для использования в теплицах — SadimVmeste.ru

Минеральные субстраты для использования в теплицах — SadimVmeste.ru

Интенсивные технологии в защищенном грунте – это выращивание овощей без почвы, за счет питательного раствора. Корнеобитаемой средой являются минеральные субстраты. Они должны отвечать следующим требованиям: быть инертными, химически нейтральными, не содержать каких-либо токсических веществ; обладать достаточной водоудерживающей способностью и хорошей аэрацией; быть достаточно прочными, не терять свои свойства в процессе использования.

Гравий используется давно в гидропонных теплицах. Он инертен, недорогой. Обычно используется кремниевый или кварцевый гравий, не содержащий углекислого кальция, в виде частиц 6-9 мм округлой формы. Он требует частой дезинфекции, так как заселяется грибной и бактериальной флорой.

Гранитный щебень используется в качестве субстрата довольно широко. Размер частиц 3-15 мм, а для рассады – 3-8 мм. Он обладает хорошей воздухо- и водопроницаемостью, капельки раствора хорошо удерживаются на поверхности частиц.

Вермикулит получают, подвергая тепловой обработке слюду, при температуре 900-1000°С порода вспучивается, увеличиваясь в размере в 15-25 раз. Рекомендуемый размер частиц при выращивании растений 5-15 мм. Однако он непрочный и чаще используется как добавка к другим субстратам.

Перлит – силикатный материал вулканического происхождения. После измельчения и сортировки его нагревают в печах при очень высокой температуре, при этом образуются мелкие белые агрегаты. Они обладают хорошей водопоглощающей способностью, теплоизоляционными свойствами, благодаря чему корни предохраняются от перегрева. Рекомендуемый размер частиц 5—15 мм. Перлит – субстрат непрочный, при многократном использовании крошится. Без замены можно использовать 3–4 года, после чего его вносят в почву для улучшения ее структуры.

Керамзит получают из глинистых пород путем вспучивания при температуре 1150-1250°С. Это зернистый субстрат пористого строения, обладает хорошими теплоизоляционными и водоудерживающими свойствами. Однако в процессе использования крошится, на его поверхности откладываются соли.

Цеолит – осадочная алюмосиликатная горная порода, содержит микро- и макроэлементы, обладает свойством избирательно адсорбировать вещества.

В качестве субстрата используют высокомолекулярные синтетические соединения типа вспененного полистирола, пенополиуретана и др. Вспененный полистирол представляет собой шарики диаметром 4-12 мм. Материал химически нейтрален, не теряет свои свойства в процессе использования.

Ионитная смола – смесь катионов и анионов, которая содержит все необходимые растениям элементы питания. По мере роста и развития растений питательные вещества освобождаются из смол путем обмена на другие ионы, поступающие из поливной воды.

Минеральная вата

Минеральную вату получают из расплавленной каменной массы различных горных пород и отходов промышленности: базальта, диабозита, доменных шлаков с добавлением глины, известняка, фенольной смолы. Жидкий расплав (температура 1500-2000°С) попадает в центрифугу и при охлаждении превращается в тонкие волокна толщиной 0,005 мм. Для увеличения гигроскопичности к волокнам добавляют связывающее вещество (бакелит). Выпускаются следующие виды минеральной ваты: гродан, вилан, гравилен, базалан, «Агрос». Обычно это плиты (блоки) размером 100x20x7,5 см, 90x20x7,5 см, 100x15x7,5 см, которые упакованы в полиэтиленовую пленку.

Минеральная вата имеет ряд достоинств: хорошая пористость, влагоемкость, стерильность, долговечность, щелочная среда. Однако пока не разработаны эффективные приемы подготовки ваты для повторного использования или переработки.

 

Субстраты для выращивания растений

Субстратом принято называть различные природные компоненты и их заменители используемые в качестве среды для размещения корней растений. К субстратам относят: дерновую, листовую и хвойную земли, перегной, торф, песок, мох сфагнум, измельченную кожуру и волокна кокосового ореха, измельчённую кору хвойных деревьев, керамзит, вермикулит, перлит и другие. Состав субстрата приспосабливают к требованиям определенных растений.

 

Субстраты в гидропонных системах

Общей характеристикой большинства субстратов для гидропоники является то, что их пористость на единицу объема выше, чем в любой почве. Увеличение по­ристого пространства может составлять в среднем на 35%. Дополнительные поры обеспечивают больше кислорода в корневой зоне. Это воздействует на рост растения и является одной из причин бурного роста растений на гидропонике по сравнению с почвой. Растущим корням не приходится пробивать себе путь, как в грунте. Эта сэкономленная энергия может быть использована в любом другом месте растения.

Чтобы вещество служило хорошим субстратом, оно должно отвечать опреде­ленным требованиям:

  • Вещество не должно содержать избыточного хлорида натрия — поваренной соли. (Это постоянная проблема с субстратом на ко­косовом волокне.)
  • Вещество не должно содержать элементов, потенциально вредных для растений, и никаких элементов, токсичных для человека, например, тяжелых металлов.
  • Субстрат должен обладать долговечной структурой и не слишком удерживать минеральные элементы.

Ученые подробно изучают множество параметров, являющихся отличи­тельными чертами субстратов. Это, помимо всего прочего, физические, химические и биологические параметры, например, объемная плотность, пористость, размер частиц, а также обмениваемые ионы, pH, фитотоксич­ность. Наиболее весомыми являются влагоудерживающая способность и влагоемкость.

  • Влагоемкость — это количество воды, которое данный объем субстрата способен впитать.
  • Вла­гоудерживающая способность — это сила, удерживающая воду в субстрате. Она определяется измерением обратной силы — всасывающей силы, которую корни должны приложить для впитывания воды; обычно она выражается в килопаскалях.

В хорошем субстрате влагоудержание не должно быть очень сильным. Если сила, удерживающая воду в субстрате, больше, чем могут обе­спечить корни, то растение погибнет. С другой стороны, если влагоудержание слабое, субстрат высыхает слишком быстро. Один из основных залогов успеха в гидропонике — это гармонизация оросительною цикла с влагоемкостью и влагоудержанием субстрата.

Другое важное свойство субстрата — его максимальная нейтральность. Он не должен влиять ни на pH, ни на электропроводность среды. Поверхность частиц не­которых субстратов обладаем электрическим зарядом, который захватывает определенные растворенные ионы, тем самым изменяя состав питательного раствора. Не все элементы в равной степени подвержены такому захвату. Например, нитрат (NO3), главный источник азота в гидропонике обладает высокой растворимостью и низкой притягатель­ностью для положительно заряженных частиц, поэтому он всегда доступен для растений. И напротив, другой распространенный источник азота, ион аммония NH4+ обладает высокой притягательностью для отрицательно заряженных частиц, что отражается на его доступности.

Стечением времени отложения мертвой органики и сухих солей нарушают однородность многих субстратов, создавая в среде пазухи, неблагоприятные для корней. Субстрат становится всё менее однородным и все больше реагирует с питательным раствором посредством отложений разлагающейся орга­ники. Характеристики субстрата повлияют на бактериальную жизнь, которая будет на нем развиваться, и на то как бороться с разлагающейся органикой.

 

Разновидности субстратов

Субстраты бывают двух типов — неорганические и органические. На применение органических субстратов базируется один из методов гидропоники — хемопоника. Ниже представленный перечень некоторых из наиболее популярных субстратов.

Неорганические субстраты:

  • минеральная вата;
  • стекловата;
  • лавовые породы;
  • пемза;
  • перлит;
  • вермикулит;
  • гравий;
  • гранитный щебень;
  • песок;
  • керамзит;
  • цеолиты.
  • гидрогель.

 

Органические субстраты:

  • торфяной мох;
  • сфагновый мох;
  • кокосовая койра;
  • опилки;
  • древесная кора;
  • рисовая шелуха;
  • отходы хлопчатника.

Субстраты могу комбинировать в различные беспочвенные смеси для достижения необходимых свойств.

 

Для более подробного изучения темы рекомендуем посетить соответствующий раздел форума: «Субстраты».

 

Литература

  1. Уильям Тексье. Гидропоника для всех. Все о садоводстве на дому. — М.: HydroScope, 2013. — 296 с. — ISBN 978-2-84594-089-5.

Механизмы приобретения минерального субстрата термоацидофилом

1. Бойд Э.С., Гамильтон Т.Л., Спир Дж.Р., Лавин М., Питерс Дж.В.
2010.
[FeFe]-гидрогеназа в Йеллоустонском национальном парке: свидетельство ограничения расселения и консерватизма филогенетической ниши. ИСМЕ J
4: 1485–1495. doi: 10.1038/ismej.2010.76. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Cox A, Shock EL, Havig JR.
2011.
Переход к микробному фотосинтезу в экосистемах горячих источников. Хим Геол
280:344–351. doi: 10.1016/j.chemgeo.2010.11.022. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

3. Бойд Э.С., Фекто К. М., Хавиг Дж.Р., Шок Э.Л., Питерс Дж.В.
2012.
Моделирование ареала обитания фототрофов в Йеллоустонском национальном парке: на пути к созданию комплексного фитнес-ландшафта. Фронт микробиол
3:221. doi: 10.3389/fmicb.2012.00221. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Hamilton TL, Vogl K, Bryant DA, Boyd ES, Peters JW.
2012.
Экологические ограничения, определяющие распространение, состав и эволюцию хлорофототрофов в термических особенностях Йеллоустонского национального парка. Геобиология
10: 236–249. doi: 10.1111/j.1472-4669.2011.00296.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Изменить JP, Shock EL.
2001.
Энергетика суммарных метаболических реакций термофильных и гипертермофильных архей и бактерий. FEMS Microbiol Rev.
25:175–243. doi: 10.1111/j.1574-6976.2001.tb00576.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Urschel MR, Kubo MD, Hoehler TM, Peters JW, Boyd ES.
2015.
Предпочтение источника углерода в хемосинтетических сообществах горячих источников. Appl Environ Microbiol
81:3834–3847. doi: 10.1128/AEM.00511-15. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Spear JR, Walker JJ, McCollom TM, Pace NR.
2005.
Водород и биоэнергетика в геотермальной экосистеме Йеллоустона. Proc Natl Acad Sci U S A
102: 2555–2560. doi: 10.1073/pnas.0409574102. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Nordstrom DK, Ball JW, McCleskey RB.
2005.
Грунтовые воды в поверхностные воды: химия термальных оттоков в Йеллоустонском национальном парке, стр. 73–94. В
Инскип В.П., Макдермотт Т.Р. (редактор), Геотермальная биология и геохимия в Йеллоустонском национальном парке. Публикации Университета штата Монтана, Bozeman, MT. [Академия Google]

9. Фурнье Р.О.
1989.
Геохимия и динамика гидротермальной системы Йеллоустонский национальный парк. Annu Rev Земля Планета Наука
17:13–53. doi: 10.1146/annurev.ea.17.050189.000305. [CrossRef] [Google Scholar]

10. Truesdell AH, Fournier RO.
1976 год.
Условия в более глубоких частях системы горячих источников Йеллоустонского национального парка, штат Вайоминг. Отчет с открытым файлом 76-428. Геологическая служба США, Рестон, Вирджиния. [Google Scholar]

11. Уайт Д.Е., Глушитель LJP, Трусделл А.Х.
1971.
Гидротермальные системы с преобладанием пара по сравнению с системами горячей воды. Экон Геол
66:75–97. doi: 10.2113/gsecongeo.66.1.75. [CrossRef] [Google Scholar]

12. Nordstrom DK, McCleskey RB, Ball JW.
2009.
Геохимия серы гидротермальных вод Йеллоустонского национального парка. IV. Кислотно-сульфатные воды. Аппл Геохим
24:191–207. doi: 10.1016/j.apgeochem.2008.11.019. [CrossRef] [Google Scholar]

13. Colman DR, Poudel S, Hamilton TL, Havig JR, Selensky MJ, Shock EL, Boyd ES.
2018.
Геобиологические обратные связи и эволюция термоацидофилов. ИСМЕ J
12: 225–236. doi: 10.1038/ismej.2017.162. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Уайт Д.Э., Хатчинсон Р.А., Кейт Т.Э.
1988 год.
Геология и замечательная термальная активность в бассейне гейзеров Норрис, Йеллоустонский национальный парк, Вайоминг. Профессиональный документ 1456. Геологическая служба США, Рестон, Вирджиния. [Google Scholar]

15. Ball JW, McMleskey RB, Nordstrom DK.
2010.
Данные о химическом составе воды для отдельных источников, гейзеров и ручьев в Йеллоустонском национальном парке, штат Вайоминг, 2006–2008 гг. Отчет с открытым файлом 2010-1192
Геологическая служба США, Рестон, Вирджиния. [Академия Google]

16. Колман Д.Р., Фейл-Буска Дж., Робинсон К.Дж., Фекто К.М., Сюй Х., Шок Э.Л., Бойд Э.С.
2016.
Экологическая дифференциация планктонных и связанных с отложениями хемотрофных микробных популяций в горячих источниках Йеллоустона. FEMS Microbiol Ecol
92:fiw137. doi: 10.1093/femsec/fiw137. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Amenabar MJ, Urschel MR, Boyd ES.
2015.
Метаболическая и таксономическая диверсификация в континентальных магматических гидротермальных системах, стр. 57–96. В
Бейкерманс К. (ред.), Эволюция микробов в экстремальных условиях. Де Грюйтер, Берлин, Германия. [Академия Google]

18. Inskeep WP, Rusch DB, Jay ZJ, Herrgard MJ, Kozubal MA, Richardson TH, Macur RE, Hamamura N, Jennings RD, Fouke BW, Reysenbach AL, Roberto F, Young M, Schwartz A, Boyd ES, Badger Дж. Х., Матур Э. Дж., Ортманн А. С., Бейтсон М., Гизи Г., Фрейзер М.
2010.
Метагеномы из высокотемпературных хемотрофных систем обнаруживают геохимический контроль над структурой и функциями микробного сообщества. PLoS Один
5:e9773. doi: 10.1371/journal.pone.0009773. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Олсоп Э.Б., Бойд Э.С., Рэймонд Дж.
2014.
Слияние метагеномики и геохимии выявляет экологический контроль над биологическим разнообразием и эволюцией. БМС Экол
14:16. дои: 10.1186/1472-6785-14-16. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Inskeep WP, Jay ZJ, Tringe SG, Herrgard MJ, Rusch DB, Co YMPS.
2013.
Проект метагенома YNP: параметры окружающей среды, ответственные за распространение микробов в геотермальной экосистеме Йеллоустона. Фронт микробиол
4:67. дои: 10.3389/fmicb.2013.00067. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Inskeep W, McDermott T.
2005.
Геомикробиология кисло-сульфатно-хлоридных источников Йеллоустонского национального парка. стр. 143–162. В
Инскип В.П., Макдермотт Т.Р. (редактор), Геотермальная биология и геохимия в Йеллоустонском национальном парке. Публикации Университета штата Монтана, Bozeman, MT. [Google Scholar]

22. Boyd ES, Jackson RA, Encarnacion G, Zahn JA, Beard T, Leavitt WD, Pi Y, Zhang CL, Pearson A, Geesey GG.
2007.
Изоляция, характеристика и экология серодышащих кренархей, населяющих кисло-сульфатно-хлоридные геотермальные источники в Йеллоустонском национальном парке. Appl Environ Microbiol
73:6669–6677. doi: 10.1128/АЕМ.01321-07. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Boyd ES, Druschel GK.
2013.
Участие промежуточных форм серы в биологическом восстановлении элементарной серы в кислых, гидротермальных условиях. Appl Environ Microbiol
79: 2061–2068. doi: 10.1128/AEM.03160-12. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Xu Y, Schoonen MAA, Nordstrom DK, Cunningham KM, Ball JW.
1998.
Геохимия серы гидротермальных вод Йеллоустонского национального парка. I. Происхождение тиосульфата в водах горячих источников. Геохим Космохим Акта
62:3729–3743. doi: 10.1016/S0016-7037(98)00269-5. [CrossRef] [Google Scholar]

25. Langner HW, Jackson CR, Mcdermott TR, Inskeep WP.
2001.
Быстрое окисление арсенита в экосистеме горячих источников Йеллоустонского национального парка. Экологические научные технологии
35:3302–3309. DOI: 10.1021/es0105562. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Friedrich CG, Rother D, Bardischewsky F, Quentmeier A, Fischer J.
2001.
Окисление восстановленных неорганических соединений серы бактериями: появление общего механизма?
Appl Environ Microbiol
67:2873–2882. doi: 10.1128/AEM.67.7.2873-2882.2001. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Аменабар М.Дж., Шок Э.Л., Роден Э.Е., Питерс Д.В., Бойд Э.С.
2017.
Предпочтение микробного субстрата продиктовано потребностью в энергии, а не ее предложением. Нат Геоски
10: 577–581. дои: 10.1038/ngeo2978. [CrossRef] [Google Scholar]

28. Хубер Х., Прангишвили Д.
2006.
Sulfolobales, стр. 23–51. В
Дворкин М., Фальков С., Розенберг Э., Шлейфер К. Х., Штакебрандт Э. (редактор), Прокариоты: справочник по биологии бактерий, 3-е изд., том 3
Спрингер, Нью-Йорк, штат Нью-Йорк. [Академия Google]

29. Бойд Э.С., Ливитт В.Д., Гизи Г.Г.
2009.
Поглощение и фиксация CO2 термоацидофильным микробным сообществом, прикрепленным к осажденной сере в геотермальном источнике. Appl Environ Microbiol
75:4289–4296. doi: 10.1128/АЕМ.02751-08. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Muyzer G, Stams AJM.
2008.
Экология и биотехнология сульфатредуцирующих бактерий. Нат Рев Микробиол
6: 441–454. DOI: 10.1038/nrmicro1892. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Janssen PH, Schuhmann A, Bak F, Liesack W.
1996.
Диспропорционирование неорганических соединений серы сульфатредуцирующей бактерией Desulfocapsa thiozymogenes gen nov, sp nov. Арка микробиол
166:184–192. doi: 10.1007/s002030050374. [CrossRef] [Google Scholar]

32. Lovley DR, Phillips EJP.
1994.
Новые процессы получения анаэробных сульфатов из элементарной серы с помощью сульфатредуцирующих бактерий. Appl Environ Microbiol
60:2394–2399. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

33. Слободкин А.И., Рейзенбах А.Л., Слободкина Г.Б., Баслеров Р.В., Кострикина Н.А., Вагнер И.Д., Бонч-Осмоловская Е.А.
2012.
Thermosulfurimonas dismutans gen nov, sp nov, чрезвычайно термофильная серодиспропорционирующая бактерия из глубоководного гидротермального источника. Int J Syst Evol Microbiol
62:2565–2571. doi: 10.1099/ijs.0.034397-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Thamdrup B, Finster K, Hansen JW, Bak F.
1993.
Бактериальное диспропорционирование элементарной серы в сочетании с химическим восстановлением железа или марганца. Appl Environ Microbiol
59:101–108. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

35. Финстер К., Лисак В., Тамдруп Б.
1998.
Диспропорционирование элементарной серы и тиосульфата с помощью Desulfocapsa sulfoexigens sp. nov., новая анаэробная бактерия, выделенная из морских поверхностных отложений. Appl Environ Microbiol
64:119–125. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

36. Lovley DR, Holmes DE, Nevin KP.
2004.
Диссимиляционное восстановление Fe(III) и Mn(IV). Ад Микроб Физиол
49: 219–286. doi: 10.1016/S0065-2911(04)49005-5. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

37. Fortney NW, He S, Converse BJ, Beard BL, Johnson CM, Boyd ES, Roden EE.
2016.
Потенциал микробного восстановления оксида Fe(III) в горячем источнике Chocolate Pots, Йеллоустонский национальный парк. Геобиология
14: 255–275. дои: 10.1111/gbi.12173. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Кашефи К., Шелоболина Е.С., Эллиот В.К., Ловли Д.Р.
2008.
Рост термофильных и гипертермофильных Fe(III)-редуцирующих микроорганизмов на железистом смектите как единственном акцепторе электронов. Appl Environ Microbiol
74: 251–258. doi: 10.1128/АЕМ.01580-07. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Слободкин А.И.
2005.
Термофильное микробное восстановление металлов. микробиология
74: 501–514. doi: 10.1007/s11021-005-0096-6. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Слободкина Г.Б., Пантелеева А.Н., Соколова Т.Г., Бонч-Осмоловская Е.А., Слободкин А.И.
2012.
Carboxydocella manganica sp nov, термофильная, диссимилирующая Mn(IV)- и Fe(III)-редуцирующая бактерия из камчатского горячего источника. Int J Syst Evol Microbiol
62:890–894. doi: 10.1099/ijs.0.027623-0. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

41. Козубал М., Макур Р.Е., Корф С., Тейлор В.П., Акерман Г.Г., Надь А., Инскип В.П.
2008.
Выделение и распространение нового окисляющего железо кренархеона из кислых геотермальных источников в Йеллоустонском национальном парке. Appl Environ Microbiol
74:942–949. doi: 10.1128/АЕМ.01200-07. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Inskeep WP, Macur RE, Harrison G, Bostick BC, Fendorf S.
2004.
Биоминерализация As(V)-водного оксигидроксида железа в микробных матах кисло-сульфатно-хлоридного геотермального источника Йеллоустонского национального парка. Геохим Космохим Акта
68:3141–3155. doi: 10.1016/j.gca.2003.090,020. [CrossRef] [Google Scholar]

43. Джонсон Д.Б., Канао Т., Хедрих С.
2012.
Окислительно-восстановительные превращения железа при экстремально низких значениях рН: фундаментальные и прикладные аспекты. Фронт микробиол
3:96. doi: 10.3389/fmicb.2012.00096. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. Beam JP, Bernstein HC, Jay ZJ, Kozubal MA, deM Jennings R, Tringe SG, Inskeep WP.
2016.
Сборка и сукцессия сообществ микробного мата оксида железа в кислых геотермальных источниках. Фронт микробиол
7:25. дои: 10.3389/fmicb.2016.00025. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Yoshida N, Nakasato M, Ohmura N, Ando A, Saiki H, Ishii M, Igarashi Y.
2006.
Acidianus manzaensis sp nov, новый термоацидофильный археон, растущий автотрофно путем окисления H 2 с восстановлением Fe 3+ . Карр микробиол
53:406–411. doi: 10.1007/s00284-006-0151-1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

46. Kozubal MA, Macur RE, Jay ZJ, Beam JP, Malfatti SA, Tringe SG, Kocar BD, Borch T, Inskeep WP.
2012.
Круговорот микробного железа в кислых геотермальных источниках Йеллоустонского национального парка: интеграция молекулярных исследований, геохимических процессов и выделение новых Fe-активных микроорганизмов. Фронт микробиол
3:109. doi: 10.3389/fmicb.2012.00109. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Giaveno MA, Urbieta MS, Ulloa JR, Toril EG, Donati ER.
2013.
Физиологическая универсальность и гибкость роста как основные характеристики нового термоацидофильного штамма Acidianus , выделенного из геотермальной зоны Копахуэ в Аргентине. Микроб Экол
65:336–346. doi: 10.1007/s00248-012-0129-4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Webster JG, Nordstrom DK.
2003.
Геотермальный мышьяк, стр. 101–125. В
Welch AH, Stollenwerk KG (ed), Мышьяк в грунтовых водах. Спрингер, Бостон, Массачусетс. [Google Scholar]

49. Виид В.Х., Пирссон Л.
1891.
Нахождение серы, аурипигмента и реальгара в Йеллоустонском национальном парке. Am J Sci
42:401–405. [Google Scholar]

50. Masscheleyn PH, Delaune RD, Patrick WH Jr.
1991.
Влияние окислительно-восстановительного потенциала и рН на образование и растворимость мышьяка в загрязненной почве. Экологические научные технологии
25:1414–1419. doi: 10.1021/es00020a008. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

51. Льюис А.Е.
2010.
Обзор осаждения сульфидов металлов. Гидрометаллургия
104:222–234. doi: 10.1016/ж.гидромет.2010.06.010. [CrossRef] [Google Scholar]

52. Macur RE, Jay ZJ, Taylor W, Kozubal MA, Kocar BD, Inskeep WP.
2013.
Структура микробного сообщества и биогеохимия серы в слабокислых сульфидных геотермальных источниках Йеллоустонского национального парка. Геобиология
11:86–99. doi: 10.1111/gbi.12015. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Донахью-Кристиансен Дж., Д’Империо С., Джексон К.Р., Инскип В.П., Макдермотт Т.Р.
2004.
Арсенитоокисляющая 9Штамм 0017 Hydrogenobaculum , выделенный из кисло-сульфатно-хлоридного геотермального источника в Йеллоустонском национальном парке. Appl Environ Microbiol
70: 1865–1868. doi: 10.1128/AEM.70.3.1865-1868.2004. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

54. Oremland RS, Stolz JF.
2003.
Экология мышьяка. Наука
300:939–944. doi: 10.1126/science.1081903. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Jackson CR, Langner HW, Donahoe-Christiansen J, Inskeep WP, McDermott TR.
2001.
Молекулярный анализ структуры микробного сообщества кислого термального источника, окисляющего арсенит. Окружающая среда микробиол
3: 532–542. дои: 10.1046/j.1462-2920.2001.00221.х. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Huber H, Stetter KO.
2015.
Ацидиан , стр. 1–5. В
Уитмен В. Б., Рейни Ф., Кампфер П., Трухильо М., Чун Дж., ДеВос П., Хедлунд Б., Дедыш С. (редактор), руководство Берджи по систематике архей и бактерий. Интернет-библиотека Wiley. John Wiley & Sons, Нью-Йорк, штат Нью-Йорк. [Google Scholar]

57. Hochstein RA, Amenabar MJ, Munson-McGee JH, Boyd ES, Young MJ.
2016.
Acidianus yailed веретенообразный вирус: новый архейный крупнохвостый веретенообразный вирус, обнаруженный независимыми от культуры методами. Джей Вирол
90:3458–3468. doi: 10.1128/ОВИ.03098-15. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. You XY, Liu C, Wang SY, Jiang CY, Shah SA, Prangishvili D, She QX, Liu SJ, Garrett RA.
2011.
Геномный анализ Acidianus Hospitalis W1-хозяина для изучения жизненных циклов кранархеального вируса и плазмиды. экстремофилы
15: 487–497. doi: 10.1007/s00792-011-0379-y. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Garcia AA, Druschel GK.
2014.
Кинетика укрупнения элементарной серы. Геохим Транс
15:11. дои: 10.1186/с12932-014-0011-з. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Рейзенбах А.Л., Лю Ю.Т., Банта А.Б., Беверидж Т.Дж., Кирштейн Д.Д., Схоутен С., Тиви М.К., Фон Дамм К.Л., Войтек М.А.
2006.
Вездесущий термоацидофильный археон из глубоководных гидротермальных жерл. Природа
442:444–447. дои: 10.1038/nature04921. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

61. Urbieta MS, Rascovan N, Castro C, Revale S, Giaveno MA, Vazquez M, Donati ER.
2014.
Черновая последовательность генома нового термоацидофильного археона Acidianus copahuensis , штамм ALE1, выделенный из вулканического района Копахуэ в Неукен, Аргентина. Геном объявляет
2:e00259-14. doi: 10.1128/genomeA.00259-14. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

62. Shi L, Squier TC, Zachara JM, Fredrickson JK.
2007.
Дыхание (гидр)оксидов металлов Shewanella и Geobacter : ключевая роль мультигемных цитохромов с-типа. Мол Микробиол
65:12–20. doi: 10.1111/j.1365-2958.2007.05783.x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

63. Нилсон К.Х., Скотт Дж.
2006.
Экофизиология рода Shewanella , стр. 1133–1151. В
Дворкин М., Фальков С., Розенберг Э., Шлейфер К. Х., Штакебрандт Э. (редактор), Прокариоты: справочник по биологии бактерий, 3-е изд., том 7
Спрингер, Нью-Йорк, штат Нью-Йорк. [Google Scholar]

64. Фредриксон Дж.К., Ромайн М.Ф., Беляев А.С., Аухтунг Дж.М., Дрисколл М.Е., Гарднер Т.С., Нилсон К.Х., Остерман А.Л., Пинчук Г., Рид Д.Л.
2008.
На пути к биологии экологических систем Shewanella . Нат Рев Микробиол
6:592. doi: 10.1038/nrmicro1947. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

65. Ши Л.А., Ричардсон Д.Дж., Ван З.М., Керисит С.Н., Россо К.М., Захара Дж.М., Фредриксон Дж.К.
2009.
Роль цитохромов внешней мембраны Shewanella и Geobacter во внеклеточном переносе электронов. Представитель Environ Microbiol
1: 220–227. doi: 10.1111/j.1758-2229. 2009.00035.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

66. Laska S, Lottspeich F, Kletzin A.
2003.
Связанная с мембраной гидрогеназа и редуктаза серы гипертермофильных и ацидофильных архей Ацидиан амбивалентный . микробиология
149: 2357–2371. doi: 10.1099/мик.0.26455-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67. Brock TD, Brock KM, Belly RT, Weiss RL.
1972.
Sulfolobus — новый род сероокисляющих бактерий, живущих при низком рН и высокой температуре. Арка Микробиол
84:54–68. дои: 10.1007/BF00408082. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

68. Frederiksen TM, Finster K.
2004.
Трансформация неорганических соединений серы и ассимиляция органического и неорганического углерода серодиспропорционирующей бактерией Десульфокапса сульфоэксигенс . Антони Ван Левенгук
85:141–149. doi: 10.1023/B:ANTO.0000020153.82679.f4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

69. Schink B.
1997.
Энергетика синтрофической кооперации в метаногенной деградации. Микробиол Мол Биол Рев
61: 262–280. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

70. Kraemer SM.
2004.
Растворение и растворимость оксида железа в присутствии сидерофоров. Аква Наука
66:3–18. doi: 10.1007/s00027-003-0690-5. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

71. Роден Э.Э., Захара Дж.М.
1996.
Микробное восстановление кристаллических оксидов железа (III): влияние площади поверхности оксида и потенциал роста клеток. Экологические научные технологии
30:1618–1628. дои: 10.1021/es9506216. [CrossRef] [Google Scholar]

72. Ливо К.Е., Крузе Ф.А., Кларк Р.Н., Кокали Р.Ф., Шанкс В. III.
2007.
Гидротермально измененные горные породы и отложения горячих источников в Йеллоустонском национальном парке, охарактеризованные с помощью данных аэрофотосъемки в видимой и инфракрасной спектроскопии. Профессиональный документ 1717. Геологическая служба США, Рестон, Вирджиния. [Академия Google]

73. Ленгке М.Ф., Темпель Р.Н.
2003.
Кинетика окисления природного реальгара и аморфного AsS. Геохим Космохим Акта
67:859–871. doi: 10.1016/S0016-7037(02)01227-9. [CrossRef] [Google Scholar]

74. Lengke MF, Sanpawanitchakit C, Tempel RN.
2009.
Окисление и растворение мышьяксодержащих сульфидов. Минерал
47: 593–613. doi: 10.3749/canmin.47.3.593. [CrossRef] [Google Scholar]

75. Zhang JH, Zhang X, Ni YQ, Yang XJ, Li HY.
2007.
Биовыщелачивание мышьяка из лекарственного реальгара чистыми и смешанными культурами. Технологическая биохимия
42:1265–1271. doi: 10.1016/j.procbio.2007.05.021. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

76. Tributsch H, Bennett JC.
1981.
Полупроводниково-электрохимические аспекты бактериального выщелачивания. 1. Окисление сульфидов металлов с большими энергетическими щелями. J Chem Technol Биотехнология
31: 565–577. [Google Scholar]

77. Tributsch H, Bennett JC.
1981.
Полупроводниково-электрохимические аспекты бактериального выщелачивания. 2. Обзор дебиторегулирующих свойств сульфидов. J Chem Technol Биотехнология
31: 627–635. [Google Scholar]

78. Шипперс А. , Санд В.
1999.
Бактериальное выщелачивание сульфидов металлов протекает по двум косвенным механизмам через тиосульфат или через полисульфиды и серу. Appl Environ Microbiol
65:319–321. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

79. Шаудер Р., Мюллер Э.
1993.
Полисульфид как возможный субстрат для серовосстанавливающих бактерий. Арка микробиол
160:377–382. дои: 10.1007/BF00252224. [CrossRef] [Google Scholar]

80. Шаудер Р., Крогер А.
1993.
Бактериальное серное дыхание. Арка микробиол
159: 491–497. дои: 10.1007/BF00249025. [CrossRef] [Google Scholar]

81. Камышный А., Гун Дж., Рыжков Д., Войцековский Т., Лев О.
2007.
Равновесное распределение полисульфид-ионов в водных растворах при различных температурах путем быстрой однофазной дериватизации. Экологические научные технологии
41:2395–2400. дои: 10.1021/es062637+. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

82. Segerer A, Neuner A, Kristjansson JK, Stetter KO.
1986 год.
Acidianus infernus gen nov, sp nov и Acidianus brierleyi comb nov — факультативно аэробные, крайне ацидофильные термофильные серометаболизирующие архебактерии. Int J Syst Bacteriol
36: 559–564. doi: 10.1099/00207713-36-4-559. [CrossRef] [Google Scholar]

83. He ZG, Zhong HF, Li YQ.
2004.
Acidianus tengchongensis sp nov — новый вид ацидотермофильных архей, выделенный из ацидотермального источника. Карр микробиол
48:159–163. doi: 10.1007/s00284-003-4155-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

84. Plumb JJ, Haddad CM, Gibson JAE, Franzmann PD.
2007.
Acidianus sulfidivorans sp nov, чрезвычайно ацидофильный, термофильный археон, выделенный из сольфатары на острове Лихир, Папуа-Новая Гвинея, и исправление описания рода. Int J Syst Evol Microbiol
57:1418–1423. дои: 10.1099/ijs.0.64846-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

85. Фурнье Р., Вельтман У., Коунс Д., Уайт Л., Яник С.
2002.
Результаты еженедельного химического и изотопного мониторинга отдельных источников в бассейне гейзеров Норрис, Йеллоустонский национальный парк, в течение июня-сентября 1995 г. Отчет из открытых файлов 2002-344 гг.
Геологическая служба США, Рестон, Вирджиния. [Google Scholar]

86. Гамильтон Т.Л., Бойд Э.С., Питерс Дж.В.
2011.
Экологические ограничения лежат в основе распространения и филогенетического разнообразия nifH в геотермальном комплексе Йеллоустон. Микроб Экол
61:860–870. дои: 10.1007/s00248-011-9824-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

87. Hamilton TL, Peters JW, Skidmore ML, Boyd ES.
2013.
Молекулярные доказательства активного эндогенного микробиома под ледниковым льдом. ИСМЕ J
7:1402–1412. doi: 10.1038/ismej.2013.31. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

88. Boyd ES, Cummings DE, Geesey GG.
2007.
Минералогия влияет на структуру и разнообразие бактериальных сообществ, связанных с геологическим субстратом в первозданном водоносном горизонте. Микроб Экол
54:170–182. дои: 10.1007/s00248-006-9187-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

89. Lovley DR, Phillips EJ.
1987.
Экспресс-анализ микробиологически восстанавливаемого трехвалентного железа в водных отложениях. Appl Environ Microbiol
53:1536–1540. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

90. Fogo JK, Popowsky M.
1949 год.
Спектрофотометрическое определение сероводорода методом метиленового синего. Анальная химия
21: 732–734. doi: 10.1021/ac60030a028. [CrossRef] [Google Scholar]

91. Viollier E, Inglett PW, Hunter K, Roychoudhury AN, Van Cappellen P.
2000.
Новый взгляд на феррозиновый метод: определение Fe(II)/Fe(III) в природных водах. Аппл Геохим
15: 785–790. doi: 10.1016/S0883-2927(99)00097-9. [CrossRef] [Google Scholar]

92. Cypionka H, ​​Pfennig N.
1986 год.
Выходы роста Desulfotomaculum orientis с водородом в культуре хемостата. Арка микробиол
143: 396–399. дои: 10.1007/BF00412808. [CrossRef] [Google Scholar]

93. Джонсон Д.Л.
1971.
Одновременное определение арсенатов и фосфатов в природных водах. Экологические научные технологии
5:411–414. doi: 10.1021/es60052a005. [CrossRef] [Google Scholar]

Minerals — Brill Substrate

Минералы — Субстрат Brill

Минералы

Для улучшения структуры субстрата

Минеральное сырье в основном используется в качестве добавок к субстратам для улучшения их физических свойств. Они оптимизируют свойства субстрата с точки зрения структурной стабильности, воздухоемкости, дренажа или способности к повторному смачиванию.

Пожалуйста, позвоните нам

Минералы в субстрате

Перлит

Перлит представляет собой минеральный заполнитель, состоящий из природной вулканической породы и расширенный путем термической обработки. Он имеет белый цвет, очень легкий, пористый и не содержит вредных для растений веществ. Этот минерал обладает очень высокой воздухоемкостью и, таким образом, обеспечивает воздухоемкость субстрата. Он легко повторно смачивается, структурно стабилен и имеет нейтральный pH, что способствует повторному смачиванию и капиллярности субстрата. Он используется в качестве заполнителя в субстратах с содержанием до примерно 30%.

Глина является очень важным минеральным заполнителем для производства субстрата. Он поглощает питательные вещества и медленно отдает их растениям в процессе выращивания. Это предотвращает быстрое вымывание питательных веществ. Помимо высокой буферной емкости для питательных веществ, глины обладают хорошей влагоемкостью и обеспечивают более быстрое повторное увлажнение субстрата. Преимущества глиняных субстратов — более высокая сохранность урожая и более однородный внешний вид растений. Brill использует местные природные глины и мелкие глиняные гранулы, которые сравнительно положительно влияют на свойства основания при значительно меньшем количестве внесения.

Керамзит

Керамзит промышленно производится из природной глины термическим способом и используется в различных отраслях садоводства. Он получает свою основную структуру с открытыми порами из-за разрушения твердого обожженного материала. Благодаря своей твердости и структурной стабильности керамзит постоянно обеспечивает высокую воздухопроницаемость и безопасный дренаж в средах для выращивания. Кроме того, его открытая пористость способствует повторному смачиванию. Его свойства особенно незаменимы в контейнерных субстратах с длительным периодом культивирования, напр. черники или в контейнерах и субстратах из ям для деревьев.

Песок из региональных месторождений, промытый и просеянный до очень мелкого размера, улучшает способность субстрата к повторному смачиванию и увеличивает объемный вес. Кроме того, он поддерживает структурную стабильность и текучесть. Например, он придает контейнерным растениям большую устойчивость и поддерживает дренаж в субстрате.

Региональная

Глины высококачественные нашего региона

Структурно стабильный

Разбитый керамзит для многолетней активности корней и безопасного дренажа

Природные

Высококачественные глины из нашего региона

Видимый объем воздуха с перлитом

Мы будем рады проконсультировать вас…

Наша команда экспертов даст вам компетентный совет по нашим существующим или индивидуальным решениям.

Пожалуйста, позвоните нам

Планировщик маршрута

…лучшие субстраты природы!

Профессиональные подложки

Товары для сада

Сырье

Компания

Информация

© Copyright 2022 • Все права защищены.

Brill и TerraBRILL — торговые марки профессиональных сред для выращивания и субстратов для хобби от Kekkilä-BVB, европейского лидера в области садоводства. Kekkilä-BVB предоставляет продукты и услуги профессиональным производителям теплиц, ландшафтным дизайнерам и потребителям в более чем 100 странах мира. Мы растем вместе с нашими клиентами для лучшего будущего.

Посетите Kekkilä-BVB.com

Линкедин

Устойчивое развитие • Уведомление о конфиденциальности • Кодекс поведения • Kekkilä-BVB.com

Brill и TerraBRILL — это торговые марки профессиональных сред для выращивания и субстратов для хобби от Kekkilä-BVB, европейского лидера в области садоводства. Kekkilä-BVB предоставляет продукты и услуги профессиональным производителям теплиц, ландшафтным дизайнерам и потребителям в более чем 100 странах мира. Мы растем вместе с нашими клиентами для лучшего будущего.

Посетите Kekkilä-BVB.com

Линкедин

Устойчивое развитие • Уведомление о конфиденциальности • Кодекс поведения • Kekkilä-BVB. com

Мы используем файлы cookie на нашем веб-сайте. Некоторые из них необходимы, в то время как другие помогают нам улучшить этот веб-сайт и ваш опыт. Wenn Sie unter 16 Jahre alt sind und Ihre Zustimmung zu freiwilligen Diensten geben möchten, müssen Sie Ihre Erziehungsberechtigten um Erlaubnis bitten. Мы используем файлы cookie и другие технологии на веб-сайте. Einige von ihnen sind essenziell, während andere uns helfen, diese Website und Ihre Erfahrung zu verbessern. Personenbezogene Daten können verarbeitet werden (z. B. IP-Adressen), z. B. für personalisierte Anzeigen und Inhalte oder Anzeigen- und Inhaltsmessung. Weitere Informationen über die Verwendung Ihrer Daten finden Sie in unserer Datenschutzerklärung. Sie können Ihre Auswahl jederzeit unter Einstellungen widerufen oder anpassen.

Настройки конфиденциальности

  • Существенный

  • Статистика

Принять все

Сохранять

Индивидуальные настройки конфиденциальности

Сведения о файлах cookie

Политика конфиденциальности

Выходные данные

Настройки конфиденциальности

Wenn Sie unter 16 Jahre alt sind und Ihre Zustimmung zu freiwilligen Diensten geben möchten, müssen Sie Ihre Erziehungsberechtigten um Erlaubnis bitten. Мы используем файлы cookie и другие технологии на веб-сайте. Einige von ihnen sind essenziell, während andere uns helfen, diese Website und Ihre Erfahrung zu verbessern. Personenbezogene Daten können verarbeitet werden (z. B. IP-Adressen), z. B. für personalisierte Anzeigen und Inhalte oder Anzeigen- und Inhaltsmessung. Weitere Informationen über die Verwendung Ihrer Daten finden Sie in unserer Datenschutzerklärung. Здесь вы найдете обзор всех используемых файлов cookie. Вы можете дать свое согласие на целые категории или отображать дополнительную информацию, выбирая, таким образом, только определенные файлы cookie.

Принять все

Сохранять

Настройки конфиденциальности

Основные (1)

Основные файлы cookie обеспечивают выполнение основных функций и необходимы для правильной работы веб-сайта.

Показать информацию о файлах cookie

Скрыть информацию о файлах cookie

Имя

Печенье Борлабс

Провайдер Владелец этого сайта, Выходные данные
Назначение Сохраняет настройки посетителей, выбранных в Cookie Box файла cookie Borlabs.
Имя файла cookie borlabs-cookie
Срок действия файла cookie 1 год

Статистика (1)

Статистика

Статистические файлы cookie собирают информацию анонимно. Эта информация помогает нам понять, как наши посетители используют наш веб-сайт.

Показать информацию о файлах cookie

Скрыть информацию о файлах cookie

Принять

Гугл Аналитика

Имя

Гугл Аналитика

Провайдер Google Ireland Limited, Gordon House, Barrow Street, Dublin 4, Ирландия
Назначение Cookie от Google для анализа веб-сайта.